Revista de Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research

Vol. 27 (2025)
Artículo original

Sensibilidad a fungicidas de especies de Colletotrichum causantes de antracnosis en ñame

pdf
Jhoandys Royet Barroso
Facultad de Ciencias Agrícolas, Universidad de Córdoba, Montería, Colombia.
Rodrigo Orlando Campo Arana
Facultad de Ciencias Agrícolas, Universidad de Córdoba, Montería, Colombia.

Publicado 2025-05-08

Palabras clave

  • Control químico,
  • Dioscorea alata,
  • Dioscorea rotundata,
  • Dosis letal 50

Derechos de autor 2025 Jhoandys Royet Barroso, Rodrigo Orlando Campo Arana

Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.

Cómo citar

Royet Barroso, J., & Campo Arana, R. O. (2025). Sensibilidad a fungicidas de especies de Colletotrichum causantes de antracnosis en ñame. Revista De Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research, 27, e27671. https://doi.org/10.18271/ria.2025.671

Resumen

El ñame (Dioscorea spp.) es un tubérculo crucial para la seguridad alimentaria en las regiones tropicales. Sin embargo, su producción se ve gravemente afectada por la antracnosis (Colletotrichum spp.), con pérdidas que superan el 80%. Aunque se emplean fungicidas químicos para su manejo, su eficacia en el control es limitada. A pesar de la relevancia del cultivo de ñame, existe una carencia de estudios que evalúen la sensibilidad de los aislados de Colletotrichum causantes de la antracnosis frente a fungicidas de síntesis química. Esta investigación tuvo como objetivo determinar la sensibilidad in vitro de aislamientos de Colletotrichum spp. causantes de la antracnosis del ñame a fungicidas químicos. El ensayo se realizó bajo un diseño completamente aleatorio con un arreglo factorial que incluyó 10 aislados, seis fungicidas y cuatro dosis. Se empleó la técnica de difusión en agar para medir el porcentaje de inhibición del crecimiento micelial y la dosis letal media (DL50) se usó para clasificar la sensibilidad de los aislamientos a los fungicidas. Los fungicidas azoxistrobin, captan y clorotalonil demostraron ser los más efectivos, con una inhibición del crecimiento micelial del 76.8%, 75.5% y 73.2%, respectivamente. Por otro lado, el difenoconazol, mancozeb y benomil tuvieron una inhibición del 52.24%, 41.44% y 29.22%, respectivamente. Además, se observó resistencia de algunos aislados a estas moléculas comúnmente empleadas en campo. Se concluye que el manejo de la antracnosis del ñame debe abordarse bajo un enfoque de manejo integrado, que permita una selección adecuada de los fungicidas.

pdf

Referencias

  1. Andres, C., AdeOluwa, O., Bhullar, G. (2017). Yam (Dioscorea spp.). In: Thomas, B., Murray, B., Murphy, D. (Eds.). Encyclopedia of Applied Plant Sciences. Vol 3. pp. 435-441. Second Edition. Waltham, MA: Academic Press. 1706p. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-394807-6.00177-5
  2. Andriani, D., Wiyono, S., Widodo, W. (2017). Sensitivitas Colletotrichum spp. pada Cabai terhadap Benomil, Klorotalonil, Mankozeb, dan Propineb. Jurnal Fitopatologi Indonesia. 13(4): 119-119. doi: https://doi.org/10.14692/jfi.13.4.119
  3. Arce, C., Varela, I., Torres, S. (2019). Inhibición del crecimiento micelial de hongos asociados a antracnosis en ñame (Dioscorea alata). Agronomía Mesoamericana. 30(2): 381-393. doi:10.15517/am.v30i2.32653
  4. Archana, S., Raguchander, T., Prabakar, K. (2018). Detection of β-tubulin gene from benomyl sensitive isolates of Colletotrichum gloeosporioides causing anthracnose disease in mango. African Journal of Microbiology Research. 12(33): 806-814. doi: 10.5897/AJMR2017.8688
  5. Baggio, J., Wang, N, Peres, N., Amorim, L. (2018). Baseline sensitivity of Colletotrichum acutatum isolates from Brazilian strawberry fields to azoxystrobin, difenoconazole, and thiophanate-methyl. Tropical Plant Pathology. 43(6): 533-542. doi: https://doi.org/10.1007/s40858-018-0232-2
  6. Campo-Arana, R., Pérez-Polo, D. (2015). Efecto de la densidad de siembra y la fenología del ñame (Dioscorea spp.) sobre la antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides). Fitopatología Colombiana. 39(2): 37-40.
  7. Campo-Arana, R.O., Royet-Barroso, J. (2020). La antracnosis del ñame y estrategias de manejo: una revisión. Temas Agrarios. 25(2): 190-201. doi: https://doi.org/10.21897/rta.v25i2.2458
  8. Castellanos, G., Jara, C., Mosquera, G. (2011). Guías Prácticas de Laboratorio para el Manejo de Patógenos del Frijol. Centro Internacional de Agricultura Tropical. Publicación CIAT No. 375. Retrieved from https://hdl.handle.net/10568/54435
  9. Chechi, A., Stahlecker, J., Dowling, M., Schnabel, G. (2019). Diversity in species composition and fungicide resistance profiles in Colletotrichum isolates from apples. Pesticide biochemistry and physiology. 158: 18-24. doi: https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2019.04.002
  10. Chen, F., Tsuji, S., Li, Y., Hu, M., Bandeira, M., Câmara, M., Schnabel, G. (2020). Reduced sensitivity of azoxystrobin and thiophanate-methyl resistance in Lasiodiplodia theobromae from papaya. Pesticide biochemistry and physiology. 162: 60-68. doi: https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2019.08.008
  11. Chen, S., Luo, C., Hu, M., Schnabel, G. (2016). Sensitivity of Colletotrichum species, including C. fioriniae and C. nymphaeae, from peach to demethylation inhibitor fungicides. Plant disease. 100(12): 2434-2441. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-04-16-0574-RE
  12. Chen, S., Wang, Y., Schnabel, G., Peng, C., Lagishetty, S., Smith, K., Yuan, H. (2018). Inherent resistance to 14α-demethylation inhibitor fungicides in Colletotrichum truncatum is likely linked to CYP51A and/or CYP51B gene variants. Phytopathology. 108(11): 1263-1275. doi: https://doi.org/10.1094/PHYTO-02-18-0054-R
  13. Chen, X., Dai, D., Zhao, S., Shen, Y., Wang, H., Zhang, C. (2020). Genetic Diversity of Colletotrichum spp. Causing Strawberry Anthracnose in Zhejiang, China. Plant Disease. 104(5): 1351-1357. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-09-19-2026-RE
  14. Darkwa, K., Olasanmi, B., Asiedu, R., Asfaw, A. (2020). Review of empirical and emerging breeding methods and tools for yam (Dioscorea spp.) improvement: Status and prospects. Plant Breeding. 139(3): 474-497. doi: https://doi.org/10.1111/pbr.12783
  15. Dhavale, R.; Mulekar, V.; Jaiswal, K.; Bhosale, A.; Rothe, A. (2019). In vitro evaluation of non-systemic fungicides against Colletotrichum gloeosporioides causing fruit rot in banana. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. 8(5): 1486-1488.
  16. Dufour, D., Hershey, C., Hamaker, B., Lorenzen, J. (2021). Integrating end‐user preferences into breeding programmes for roots, tubers and bananas. International Journal of Food Science & Technology. 56(3): 1071-1075. doi: https://doi.org/10.1111/ijfs.14911
  17. Espinoza, D., Silva, H., Leyva, S., Marbán, N., Rebollar, Á. (2017). Sensitivity of Colletotrichum acutatum isolates obtained from strawberry to tiophanate-methyl and azoxystrobin fungicides. Revista mexicana de fitopatología. 35(2): 186-203.
  18. Forcelini, B., Seijo, T., Amiri, A., Peres, N., (2016). Resistance in strawberry isolates of Colletotrichum acutatum from Florida to quinone-outside inhibitor fungicides. Plant Disease. 100(10): 2050-2056. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-01-16-0118-RE
  19. Gama, A., Baggio, J., Rebello, C., Lourenco, S., Gasparoto, M., da Silva Junior, G., Amorim, L. (2020). Sensitivity of Colletotrichum acutatum Isolates from Citrus to Carbendazim, Difenoconazole, Tebuconazole, and Trifloxystrobin. Plant disease. 104(6): 1621-1628. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-10-19-2195-RE
  20. Gatarira, C., Agre, P., Matsumoto, R., Edemodu, A., Adetimirin, V., Bhattacharjee, R., Asiedu, R., et al. (2020). Genome-Wide Association Analysis for Tuber Dry Matter and Oxidative Browning in Water Yam (Dioscorea alata L.). Plants: 9(8): 969. doi: http://dx.doi.org/10.3390/plants9080969
  21. Gaviria, V., Patiño, L., Saldarriaga, A. (2013). Evaluación in vitro de fungicidas comerciales para el control de Colletotrichum spp., en mora de castilla. Ciencia y Tecnología Agropecuaria. 14(1): 67-75. doi: https://doi.org/10.21930/rcta.vol14_num1_art:344
  22. Giorgio, T., Adler, L., Sandler, H. (2020). Colletotrichum Species Isolated from Massachusetts Cranberries Differ in Response to the Fungicide Azoxystrobin. Plant Health Progress. 21(2): 103-104. doi: https://doi.org/10.1094/PHP-10-19-0075-BR
  23. Guillén, D., Cadenas, C. I., Alia, I., López, V., Andrade, M., & Juárez, P. (2017). Inhibición colonial in vitro de un aislado de Colletotrichum acutatum Simmonds a tratamientos con fungicidas. Centro Agrícola. 44(4): 11-16.
  24. Han, Y., Zeng, X., Xiang, F., Zhang, Q., Cong, G., Chen, F., Gu, Y. (2018). Carbendazim sensitivity in populations of Colletotrichum gloeosporioides complex infecting strawberry and yams in Hubei Province of China. Journal of integrative agricultura. 17(6): 1391-1400. doi: https://doi.org/10.1016/S2095-3119(17)61854-9
  25. IDEAM. 2022. Consulta y Descarga de Datos Hidrometeorológicos. Instituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales (IDEAM). Retrieved from http://dhime.ideam.gov.co/atencionciudadano/
  26. Jagtap, N., Ambadkar, C., Bhalerao, G. (2015). In vitro evaluation of different fungicides against Colletotrichum gloeosporioides causing anthracnose of pomegranate. International Journal of Agricultural Sciences. 11(2): 273-276.
  27. Katediya, M., Jaiman, R., Kumar, S. (2019). Management of chilli anthracnose caused by Colletotrichum capasici. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. 8(3): 2697-2701.
  28. López, S.; Castaño, J. (2020). In vitro effect of four fungicides on Colletotrichum gloeosporioides causing anthracnosis on the Red Globe grape variety. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales. 44(172): 747-758. doi: https://doi.org/10.18257/raccefyn.1139
  29. MADR. (2021). Cadena Productiva del Ñame. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (MADR). Retrieved from: https://sioc.minagricultura.gov.co/Yuca/Documentos/2021-03-31%20Cifras%20Sectoriales%20ñame.pdf
  30. Martin, P., Krawczyk, T., Pierce, K., Thomas, C., Khodadadi, F., Aćimović, S., Peter, K. (2021). Fungicide sensitivity of Colletotrichum species causing bitter rot of apple in the Mid-Atlantic United States. Plant Disease. 106 (2): 549-563. doi: 10.1094/pdis-06-21-1142-re.
  31. Moreira, R., Hamada, N., Peres, N., De Mio, L. (2019). Sensitivity of the Colletotrichum acutatum species complex from apple trees in Brazil to Dithiocarbamates, Methyl Benzimidazole Carbamates, and Quinone outside inhibitor fungicides. Plant disease. 103(10): 2569-2576. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-07-18-1144-RE
  32. Ntui, VO., Uyoh, E., Ita, EE., Markson, A., Tripathi, J., Okon, N., Tripathi, L. (2021). Strategies to combat the problem of yam anthracnose disease: Status and prospects. Molecular Plant Pathology. 22(10): 1302-1314. doi: https://doi.org/10.1111/mpp.13107
  33. Nwadili, C., Augusto, J., Bhattacharjee, R., Atehnkeng, J., Lopez, A., Onyeka, T., Bandyopadhyay, R. 2017. Comparative reliability of screening parameters for anthracnose resistance in water yam (Dioscorea alata). Plant disease, 101(1), 209-216. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-06-16-0924-RE
  34. Omrane, S., Audéon, C., Ignace, A., Duplaix, C., Aouini, L., Kema, G., Fillinger, S. (2017). Plasticity of the MFS1 promoter leads to multidrug resistance in the wheat pathogen Zymoseptoria tritici. MSphere. 2(5): e00393-17. doi: https://doi.org/10.1128/mSphere.00393-17
  35. Osorio, C. (1989). Control químico de la antracnosis del ñame causada por Colletotrichum gloeosporioides, Penz (No. Doc. 25497) CO-BAC, Bogotá). 1-4 p.
  36. Patrice, N., Placide, D., Madjerembe, A., Rony, M., Gabriel, D., Ulrich, B., Zachee, A. (2021). In vitro, In vivo and In situ, Effect of Mancozeb 80 WP on Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. and Sacc., Causative Agent of Anthracnose of Cashew (Anacardium occidentale L.) in Chad and Cameroon. International Journal of Pathogen Research. 6(3): 1-14. doi: 10.9734/ijpr/2021/v6i330161
  37. Perez, P., Alberto, R. (2020). Chemical Management of Anthracnose-Twister (Colletotrichum gloeosporioides and Fusarium fujikuroi) Disease of Onion (Allium cepa). Plant Pathology & Quarantine. 10(1): 198-216. doi: 10.5943/ppq/10/1/19
  38. Poti, T., Mahawan, K., Cheewangkoon, R., Arunothayanan, H., Akimitsu, K., Nalumpang, S. (2020). Detection and molecular characterization of carbendazim‐resistant Colletotrichum truncatum isolates causing anthracnose of soybean in Thailand. Journal of Phytopathology. 168(5): 267-278. doi: https://doi.org/10.1111/jph.12888
  39. R Core Team. 2022. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. URL https://www.R-project.org/.
  40. Ramdial, H., Hosein, F., Rampersad, S. (2016). Detection and molecular characterization of benzimidazole resistance among Colletotrichum truncatum isolates infecting bell pepper in Trinidad. Plant disease. 100(6): 1146-1152. https://doi.org/10.1094/PDIS-09-15-0995-RE
  41. Reis, E., Guerra, W., Reis, A., Zanatta, M., Carmona, M., Sautura, F. (2021). Fungi Resistance to Multissite Fungicides. Journal of Agricultural Science. 13(11): 141-151 doi: https://doi.org/10.5539/jas.v13n11p141
  42. Ritz, C., Baty, F., Streibig, J. C., Gerhard, D. (2015). Dose-response analysis using R. PloS one. 10(12): e0146021. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0146021
  43. Rosado, Y. (2016). Evaluación de fungicidas orgánicos y convencionales para el control de enfermedades follares en ñame (Dioscorea alata L.) (Doctoral dissertation).
  44. Royet-Barroso, J., Campo-Arana, R.O. (2021). Variabilidad morfológica y patogénica de Colletotrichum spp. en ñame en el departamento de Córdoba. Temas Agrarios. (26). doi: DOI: 10.21897/rta.v26i1
  45. Samaras, Α., Ntasiou, P., Myresiotis, C., Karaoglanidis, G. (2020). Multidrug resistance of Penicillium expansum to fungicides: whole transcriptome analysis of MDR strains reveals overexpression of efflux transporter genes. International Journal of Food Microbiology. 335: 108896. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2020.108896
  46. Sierotzki, H. (2015). Respiration inhibitors: complex III. In Ishi, H., William, D. (Eds). Fungicide resistance in plant pathogens. pp. 119-143. Springer, Tokyo. 490p. doi: https://doi.org/10.1007/978-4-431-55642-8
  47. Torres, C., Tapia, R., Higuera, I., Martin, R., Nexticapan, A., Perez, D. (2015). Sensitivity of Colletotrichum truncatum to four fungicides and characterization of thiabendazole-resistant isolates. Plant Disease. 99(11): 1590-1595. https://doi.org/10.1094/PDIS-11-14-1183-RE
  48. Usman, H., Tan, Q., Karim, M., Adnan, M., Yin, W., Zhu, F., Luo, C. (2021). Sensitivity of Colletotrichum fructicola and Colletotrichum siamense of Peach in China to Multiple Classes of Fungicides and Characterization of Pyraclostrobin-Resistant Isolates. Plant Disease. 105(11): 3459-3465. https://doi.org/10.1094/PDIS-04-21-0693-RE
  49. Villani, S., Biggs, A., Cooley, D., Raes, J., Cox, K. (2015). Prevalence of myclobutanil resistance and difenoconazole insensitivity in populations of Venturia inaequalis. Plant disease. 99(11): 1526-1536. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-01-15-0002-RE
  50. Xavier, K. V., Kc, A. N., Peres, N. A., Deng, Z., Castle, W., Lovett, W., Vallad, G. E. (2019). Characterization of Colletotrichum Species Causing Anthracnose of Pomegranate in the Southeastern United States. Plant Disease. 103(11): 2771-2780. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-19-0598-RE
  51. Yokosawa, S., Eguchi, N., Kondo, K. I., Sato, T. (2017). Phylogenetic relationship and fungicide sensitivity of members of the Colletotrichum gloeosporioides species complex from apple. Journal of General Plant Pathology. 83(5): 291-298. doi: https://doi.org/10.1007/s10327-017-0732-9
  52. Zhang, C., Imran, M., Xiao, L., Hu, Z., Li, G., Zhang, F., Liu, X. (2021). Difenoconazole resistance shift in Botrytis cinerea from Tomato in China associated with inducible expression of CYP51. Plant Disease. 105(2): 400-407. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-03-20-0508-RE
  53. Zhang, L., Song, L., Xu, X., Zou, X., Duan, K., Gao, Q. (2020). Characterization and fungicide sensitivity of Colletotrichum species causing strawberry anthracnose in Eastern China. Plant disease. 104(7): 1960-1968. doi: https://doi.org/10.1094/PDIS-10-19-2241-RE
  54. Zhou, Y., Xu, J., Zhu, Y., Duan, Y., Zhou, M. (2016). Mechanism of action of the benzimidazole fungicide on Fusarium graminearum: interfering with polymerization of monomeric tubulin but not polymerized microtubule. Phytopathology. 106(8): 807-813. doi: https://doi.org/10.1094/PHYTO-08-15-0186-R
  55. Ziogas, B. N., Malandrakis, A. A. (2015). Sterol biosynthesis inhibitors: C14 demethylation (DMIs). In Ishi, H., William, D. (Eds). Fungicide resistance in plant pathogens. pp. 199-216. Springer, Tokyo. 490p. doi: https://doi.org/10.1007/978-4-431-55642-8

Artículos similares

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.