Revista de Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research

Vol. 20 Núm. 4 (2018)
Artículo original

Efecto del ácido naftalenacético y 6-bencilaminopurina en la inducción de callos embriogénicos en anteras de Carica papaya L. variedad criolla

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  • Osmar Gonzales-Zavaleta,
  • Osmar Gonzales-Zavaleta
Osmar Gonzales-Zavaleta
Universidad Nacional de Trujillo-Perú
Osmar Gonzales-Zavaleta
Universidad Nacional de Trujillo-Perú

Publicado 2018-10-29

Palabras clave

  • Carica papaya,
  • anteras,
  • microsporas,
  • ácido naftalenacético (ANA) y 6,
  • bencilaminopurina (BAP)

Cómo citar

Gonzales-Zavaleta, O. . ., & Gonzales-Zavaleta, O. . . (2018). Efecto del ácido naftalenacético y 6-bencilaminopurina en la inducción de callos embriogénicos en anteras de Carica papaya L. variedad criolla. Revista De Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research, 20(4), 400-408. https://doi.org/10.18271/ria.2018.417

Resumen

El papayo (Carica papaya L.), Caricaceae, es un cultivo importante por su alto valor nutricional y sus aplicaciones medicinales e industriales, sin embargo, este cultivo tiene problemas de plagas y enfermedades por lo cual hacen falta investigaciones para obtener variedades mejoradas de papaya. Una alternativa es el cultivo de anteras para lo cual es necesario conocer su competencia con la inducción de callos; con lo planteado el objetivo de esta experiencia fue determinar el efecto del ácido naftalenacético y 6-bencilaminopurina en la inducción de callos embriogénicos en anteras de C.  papaya L. variedad criolla. Los pimpollos obtenidos fueron medidos y agrupados según su longitud, para determinar el estado de desarrollo del grano de polen y se confirmó el estado de microspora con la coloración de carmín acético y HCl. Luego los explantes fueron sometidos a un pretratamiento en frío (6°C) por 4 días, luego se sembraron en el medio Murashige & Skoog, que contenía sacarosa (3%), fitagel (0.5%), pH de 6.0 y combinaciones de ANA y BAP a concentraciones de ppm. La evaluación se realizó durante 4 meses, el tratamiento T4 (ANA 1 y BAP 0.5) fue el mejor para el porcentaje de anteras con callos (hasta un 40%), en cuanto a microsporas inducidas el mejor fue T5 (ANA 1 y BAP 1 ) con el 2.9%. El tamaño de las anteras aumentó y el color de las mismas cambió de amarillo a marrón.  Durante el proceso de inducción no se observaron embriones, pero si desdiferenciación del tejido (meristemoides).  

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Referencias

  1. • Abdalla, A. (2016). Factores clave implicados en la embriogénesis de microsporas inducida por estrés en cebada y colza: metilación del DNA, proteínas de arabinogalactanos y auxina. (Tesis Doctoral). Madrid: Universidad Complutense de Madrid. Disponible en: https://core.ac.uk/download/pdf/42950138.pdf (Tomado el 06 de Agosto de 2018)
  2. • Dwivedi, S., Britt, A., Tripathi, L., Sharma, S., Upadhyaya, H. y Ortiz, R. (2015). Haploids: Constraints and opportunities in plant breeding. Biotechnology Advances 33: 812-829. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.biotechadv.2015.07.001
  3. • Golabadi, M., Ghanbari, Y., Keighobadi, K. y Ercisli, S. (2017). Embryo and callus induction by different factors in ovary culture of cucumber. Journal of Applied Botany and Food Quality 90, 68 – 75. doi:10.5073/JABFQ.2017.090.010
  4. • Gyauchand, K., Kumar, S., Sagar, S., Kumar, V. y Kumar, M. (2015). In-vitro androgenesis in papaya (Carica papaya L.) cv. Pusa Nanha. Journal of Applied and Natur al Science, 7 (1): 273-278. doi: https://doi.org/10.31018/jans.v7i1.601
  5. • Hazarika, R. y Chatuverdi, R. (2013). Establishment of dedifferentiated callus of haploid origin from unfertilized ovaries of tea (Camellia sinensis (L.)O.Kuntze) as a potential source of total phenolics and antioxidant activity. In vitro Cell. Dev.Biol-Plant 49:60-69 doi:10.1007/s11627-013-9490-3
  6. • Humphreys, D. y Knox, R. (2015). Doubled Haploid Breeeding in Cereals. En Al-Khayra et al. (eds), Advances in Plant Breeding Strategies: Breeding Strategies: Breeding, Biotechnology and Molecular Tools, doi: 10.1007/978-3-319-22521-0_9
  7. • Ibrahim, A., Kayat, F., Susanto, O., Ariffullah, M. y Kashiani, P. (2015). Callus induction from ovulos of kenaf (Hibiscus cannabinus L.) Biotechnoloy 14 (2):72-78. doi: 10.3923/biotech.2015.72.78
  8. • Kalam, M., Golam, M. y Amin, L. 2013. Effects of different culture media and flower bud size on haploid plant production through anther culture of three Carica species. Journal of Food, Agriculture & Environment 11 (2): 296-300. doi: https://doi.org/10.1234/4.2013.4268
  9. • Kiszczak, W., Kowalska, V., Kapuscinska, A., Burian, M. y Gorecka, K. (2015). Effect of low temperature on in vitro androgenesis of carrot (Daucus carota L.). In Vitro Cell.Dev.Biol.-Plant 5|(2): 135-142 doi:10.1007/s11627-015-9665-1Kouakou Laurent
  10. • Kouakou, K., Doubi, T., Koffi, K., Kouassi, K., Kouakou, T., Baudoin, J. y Zoro I. (2015). Androgenic potential and anther in vitro culture of Lagenaria siceraria (Molina) Standl an edible-seed cucurbit. Int. J. Biol. Chem. Sci. 9(4): 1779-1789. doi : http://dx.doi.org/10.4314/ijbcs.v9i4.4
  11. • Kurtar, E., Balkaya, A. y Ozbakir, M. (2018). Production of Callus Mediated Gynogenic Haploids in Winter Squash (Cucurbita maxima Duch.) and Pumpkin (Cucurbita moschata Duch.). Czech J. Genet. Plant Breed., 54 (1): 9–16. doi: 10.17221/30/2017-CJGPB
  12. • Makowska, K., Oleszczuk, S. y Zimny, J. (2017). The Effect of Copper on Plant Regeneration in Barley Microspore Culture. Czech J. Genet. Plant Breed., 53 (1): 17–2 doi: 10.17221/82/2016-CJGPB
  13. • Murashige, T y Skoog, F. (1962). A Revised Medium for Rapid Growth and Bio Assays with Tobacco Tissue Cultures". Physiologia Plantarum. 15 (3): 473 497. doi:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.
  14. • Navarro, A., Rojas, E., Lazcano, M. y Vera, O. (2016). Propiedades funcionales de semillas de papaya (Carica papaya L.). Revista de Ciencias de la Salud. 3 (7): 48-57.Disponible en: www. ecorfan.org/Bolivia (Tomado el 06 de Agosto de 2018)
  15. • Parra, V. (2015). Aspectos básicos y aplicados de la inducción de embriogénesis en microsporas de pimiento y colza. (Tesis Doctoral). Valencia: Universitat Politècnica de València. Disponible en: http://hdl.handle.net/10251/48518 (Tomado el 06 de Agosto de 2018)
  16. • Perera, P., Ordoñez, C., Lopez-Lavalle, L. y Dedicova, B. (2014). A milestone in the doubled haploid pathway of cassava. Protoplasma 251:233-246 doi: 10.1007/s00709-013-0543-6
  17. • Rivas-Sendra, A., Corral-Martínez, P., Camacho-Fernández, C. y Seguí-Simarro, J. (2015). Improved regeneration of eggplant doubled haploids from microspore-derived calli through organogenesis. Plant Cell Tissue Organ Cult 122:759-765
  18. doi 10.1007/s11240-015-0791-6
  19. • Soriano, M., Li, H. y Boutillier, K. (2013). Microspore embryogenesis: establishment of embryo identity and pattern in culture. Plant Reprod, 26: 181-196. doi 10.1007/s00497-013-0226-7
  20. • Yogiraj, V., Goyal P., Chauhan,C., Goyal, A. y Vyas, B. 2014. Carica papaya Linn: An Overview. International Journal of Herbal Medicine 2014; 2 (5): 01-08. Disponible en: www.florajournal.com (Tomado el 06 de Agosto de 2018)
  21. • Zur,I., Dubas, E., Krzewska, M y Janowiak, F. (2016). Current insights into hormonal regulation of microspore embryogenesis. En Seguí-Simarro, J.,ed. (2016). Doubled haploidy In model and recalcitrant species. Lausanne: Frontiers Media. doi; 10.3389/978-2-88919-783-5

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