Vol. 24 Núm. 1 (2022)
Artículo original

Influencia bacteriana y fúngica en la mineralización de estiércol bovino: evidencia sobre la fertilidad del suelo en el cultivo de quinua (Chenopodium quinoa Willd.)

Víctor Paco Perez
Facultad de Ciencias Agrarias y Naturales FCAN. Universidad Técnica de Oruro UTO.
Marcelo Gonzales Torrico
Facultad de Ciencias Agrarias y Naturales FCAN. Universidad Técnica de Oruro UTO.
Ermindo Barrientos Pérez
Facultad de Ciencias Agrarias y Naturales FCAN. Universidad Técnica de Oruro UTO.
Felipe Carevic
Universidad Arturo Prat

Publicado 2022-02-21

Palabras clave

  • estiércol ,
  • bacteriana ,
  • fúngica ,
  • mineralización ,
  • fertilidad

Cómo citar

Paco Perez, V. ., Gonzales Torrico, M., Barrientos Pérez, E., & Carevic, F. (2022). Influencia bacteriana y fúngica en la mineralización de estiércol bovino: evidencia sobre la fertilidad del suelo en el cultivo de quinua (Chenopodium quinoa Willd.). Revista De Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research, 24(1), 9-16. https://doi.org/10.18271/ria.2022.358

Resumen

Los residuos orgánicos en el suelo a menudo se degradan por la acción dinámica de la vida edáfica. El objetivo del presente estudio fue determinar la influencia bacteriana y fúngica en la mineralización del estiércol bovino (EB) en el suelo. La investigación se realizó en el Centro Experimental Agropecuario de Condoriri, Oruro, Bolivia, a una altitud de 3.830 msnm. Se aplicó a las macetas EB en concentraciones de 0.9, 1.9, 3.3, 4.2, 5.0, 5.6 y 6.7% las cuales fueron homogenizadas con arena de río por separado, en las macetas se sembraron de 5 a 10 semillas de C. quinoa de forma manual. Se recolectaron muestras de suelo de las macetas para análisis microbiológico cada 30 días, mientras para examinar los macronutrientes se recolectó al final de la madurez fisiológica de planta. Las bacterias fueron evaluadas en cultivo de Plate Count Agar (PCA) de diluciones 10-5 y los hongos en Potato Dextrose Agar (PDA) de soluciones 10-2. Los resultados indican que el pH alcalino no reduce la población de bacterias y hongos. Se encontró que, a mayor población microbiana, el nitrógeno (N) tiene mayor mineralización que otros minerales esenciales. Por otro lado, se observó que, a mayor grado de aplicación de EB y alta concentración de humedad en el suelo, se tienen efectos favorables en el incremento de la población bacteriana y fúngica. Se concluye que la mineralización de EB depende de altas concentraciones de las poblaciones bacterianas y fúngicas como también de la humedad existente en el suelo.

Referencias

  1. Asghari, S., Neyshabouri, M.R., Abbasi, F., Aliasgharzad, N. y Oustan, S. (2009). The effects of four organic soil conditioners on aggregate stability, pore size distribution, and respiration activity in a sandy loam soil. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 33: 47-55. DOI:10.3906/tar-0804-20
  2. Bardgett, R.D., Lovell, R.D., Hobbs, P.J. y Jarvis, S.C. (1999). Seasonal changes in soil microbial communities along a fertility gradient of temperate grasslands. Soil Biology & Biochemistry, 31: 1021-1030. DOI:10.1016/S0038-0717(99)00016-4
  3. Beltrán Pineda, M.E., Rocha Gil, Z.E., Bernal Figueroa, A.A. y Pita Morales, L.A. (2017). Microorganismos funcionales en suelos con y sin revegetalización en el Municipio de Villa de Leyva, Boyacá. Colombia Forestal, 20(2): 158-170. http://dx.DOI.org/10.14483/udistrital.jour.colomb.for.2017.2.a05
  4. Brockett, B.F.T., Prescott, C.E. y Grayston, S.J. (2012). Soil moisture is the major factor influencing microbial community structure and enzyme activities across seven biogeoclimatic zones in western Canada. Soil Biology & Biochemistry, 44: 9-20. DOI:10.1016/j.soilbio.2011.09.003
  5. Cristóbal, D., Hernández, E., Maldonado, R. y Álvarez, M. (2015). Variabilidad espacial de carbono en un suelo después de 10 años de retiro e incorporación de residuos de cosecha. Terra Latinoamericana, 33(3): 199-208.
  6. Drenovsky, R.E., Steenwerth, K.L., Jackson, L.E. y Scow, K.M. (2010). Land use and climatic factors structure regional patterns in soil microbial communities. Global Ecology and Biogeography, 19: 27-39. DOI:10.1111/j.1466-8238.2009.00486.x
  7. FAO. (2009). Guía para la descripción de suelos (4ª ed.) Roma, Italia: (Trad. Vargas, R.) pp 66-67. http:// www.fao.org/3/a-a0541s.pdf
  8. Guadarrama Nonato, A., Mejía Carranza, J., Ramírez Gerardo, M.G. y Ramírez Gerardo, M.G. (2018). Mineralización de la materia orgánica en suelos con manejo diferencial en cultivo de rosa. Acta Universitaria, 28(2): 0188-6266. DOI: https://doi.org/10.15174/au.2017.1654
  9. Guzmán Estrada, A.E. (2011). Aislamiento y caracterización de bacterias solubilizadoras de fósforo a partir de cuatro suelos de la provincia de Chimborazo. Tesis Licenciatura. Riobamba. Escuela Ingeniería Agronómica. Riobamba, Ecuador. 45 p. http://dspace. Es poch.edu.ec/handle/123456789/1827
  10. Griffiths, R.I., Whiteley, A.S., O'Donnell, A.G. y Bailey, M.J. (2003). Physiological and community responses of established grassland bacterial populations to water stress. Applied and Environmental Microbiology, 69: 6961-6968. DOI:10.1128/AEM.69.12.6961-6968.2003
  11. Kätterer, T., Börjesson, G. y Kirchmann, H. (2014). Changes in organic carbon in topsoil and subsoil and microbial community composition caused by repeated additions of organic amendments and N fertilisation in a long-term field experiment in Sweden. Agriculture, Ecosystems and Environment, 189: 110-118. http://dx.doi.org/10.1016/j.agee.2014.03.025
  12. Nyamangara, J., Gotosa, J. y Mpofu, S.E. (2001). Cattle manure effects on structural stability and water retention capacity of a granitic sandy soil in Zimbabwe. Soil and Tillage Research, 62: 157-162. https://doi.org/10.1016/S0167-1987(01)00215-x
  13. Ordoñez, Y.M., Fernández, B.R., Lara, L.S., Rodríguez, A., Uribe, D.; y Sanders, I.R. (2016). Bacteria with phosphate solubilizing capacity alter mycorrhizal fungal growth both inside and outside the root and in the presence of native microbial communities. PLoS ONE, 11(6): e0154438. DOI: 10.1371/journal.pone.0154438
  14. Paul, E.A. (2007). Soil microbiology, ecology, and biochemistry (4ª ed.) Academic Press. Elsevier. Oxford. UK. 515 p.
  15. Paco Pérez, V. y Guzmán Vega, G.D. (2019). Efecto de enmiendas orgánicas sobre las poblaciones microbianas de la rizosfera del cultivo de quinua (Chenopodium quinoa Willd.) en el altiplano Sur de Bolivia. Journal of the Selva Andina Research Society, 7(1): 32-43.
  16. Ramos Vásquez, E. y Zuñiga Dávila, D. (2008). Efecto de la humedad, temperatura y pH del suelo en la actividad microbiana a nivel de laboratorio. Ecología aplicada, 7(1-2): 123-30.
  17. Sainz Rozas, H.R., Echeverría, H.E. y Angelini, H.P. (2011). Niveles de carbono orgánico y pH en suelos agrícolas de las regiones pampeana y extrapampeana argentina. Ciencia del Suelo, 29(1): 29-37.
  18. Senesi, N., Xing, B. y Huang, P.M. (2009). Biophysico-chemical processes involving natural nonliving organic matter in environmental systems. John Wiley & Sons. 837 p.
  19. Sissoko, A. y Kpomblekou, A.K. (2010). Carbon decomposition in broiler litter-amended soils. Soil Biology and Biochemistry, 42: 543-550. DOI:10.1016/j.soilbio.2009.10.007
  20. Strickland, M.S. y Rousk, J. (2010). Considering fungal: bacterial dominance in soils–methods, controls, and ecosystem implications. Soil Biology and Biochemistry, 42(9): 1385-1395. DOI:10.1016/j.soilbio.2010.05.007
  21. Tao, R., Liang, Y., Wakelin, S.A. y Chu, G. (2015=. Supplementing chemical fertilizer with an organic component increases soil biological function and quality. Applied Soil Ecology, 96: 42-51. http://dx.doi.org/10.1016/j.apsoil.2015.07.009
  22. Torsvik, V. y Øvreås, L. (2002). Microbial diversity and function in soil: from genes to ecosystems. Current Opinion in Microbiology, 5(3): 240-245.
  23. Thorn, R.G. y Lynch, M.D. (2007). Fungi and eukaryotic algae. En Paul E.A. (Ed.) Soil microbiology, ecology, and biochemistry (4ª ed.) Academic Press. Elsevier. Oxford. UK. pp 145-158.