Effects of seed treatment of cowpea bean Vigna unguiculata L. on the management of vascular wilt caused by Scleroctium rolfsii
Published 2023-08-08
Keywords
- fungicides, legumes, Quality, resistance inducers, seeds
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Abstract
The cowpea bean is a legume of economic importance for small producers in the Caribbean, Colombia; however, grain production is affected by MV vascular wilt, caused by Scleroctium rolsii, causing losses of up to 50 %. The objective of the research was to evaluate the effect of seed treatment in the management of MV. Two experiments were established, the first one was done in the laboratory, determining the active ingredient and dose that does not affect the emergence and development of the seedlings. The second was carried out in a mesh house, where the seeds were treated with the molecules and the best dose identified in the first experiment. The second experiment was established with the Caupicor 50 variety, under a completely randomized design with four repetitions. The treatments evaluated were the following: T0: absolute control, T1: Calcium nitrate (1.0 g l-1), T2: Azoxystrobin + Difenoconazole (1.0 cc l-1); T3: Trichoderma harzianum, (3.0 g Kg-1); T4: Benomyl (2.0 g Kg-1); T5: Carboxim + Thiram (2.0 g Kg-1); T6: potassium phosphite (2.0 g L-1) and T7: negative control, unprotected seeds. The treated bean seeds will be sown in disinfected soil and inoculated with a strain of Scleroctium folfsii. Every four days evaluations of incidence, severity and height were carried out. The most efficient treatments in the management of MV were T2, T3 and T5; however, T2= Azoxystrobin+difecobazol affected seedling emergence.
References
- Acurio-Vásconez, R. D. & España-Imbaquingo, C. K. (2017). Aislamiento, caracterización y evaluación de Trichoderma spp. como promotor de crecimiento vegetal en pasturas de raygrass (lolium perenne) y trébol blanco (trifolium repens). Revista de ciencias de la vida, v. 25, n. 1, 2017, p. 53-61. DOI: 10.17163/lgr.n25.2017.05
- Agrios, G. (1995). Fitopatología. 2 ed. Balderas México, D.F: Limusa, grupo noriega, 819 p.
- AGRONET. (2019). Estadística de sistemas de producción agrícola. http://www.agronet.gov.co
- AGRONET. (2020). Reporte: Área, Producción y Rendimiento Nacional por Cultivo. Agronet, Minigricultura. https://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/home.aspx?cod=1
- Alvarado-Aguayo, A., Pilaloa-David, W., Torres-Sánchez, S., Torres-Sánchez, k. 2019). Efecto de Trichoderma harzianum en el control de mildiu (Pseudoperonospora cubensis) en pepino. Agronomía Costarricense, 43(1): 101-111. DOI: https://doi.org/10.15517/rac.v43i1.35672
- Alidu, A. M. (2019). Evaluación de las fechas de siembra sobre el crecimiento y el rendimiento de tres genotipos de caupí [Vigna unguiculata (L) Walp.] En el norte de Ghana. Avances en investigación, 18 (4):1-14.
- Álvarez-Correa, C. C. (2020). Evaluación de la eficacia de los métodos de mini injertos hendidura, t invertida y yema terminal en la propagación de plantas de naranja valencia (Citrus sinensis (L.) Osbeck.). [Tesis Ingeniería agronómica]. Montería (Colombia): Universidad de Córdoba, Facultad de Ciencias, Colombia, 78 p. https://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/3556?show=full
- Álvarez-Kile, P., & Álvarez-Kile, X. (2018).. Resultados del empleo de cuatro cepas de micorrizas vesículo arbusculares en condiciones del municipio Jiguaní. Revista Granmense De Desarrollo Local, 2 (1): 56-65. https://revistas.udg.co.cu/index.php/redel/article/view/396
- Benitez-Lobo, D. J. (2018). Manejo de la marchitez vascular (Sclerotium rolfsii Sacc) del frijol caupí mediante estrategias amigables con el ambiente [Tesis Ingeniería agronómica]. Montería (Colombia): Universidad de Córdoba, Facultad de Ciencias Agrícolas, 95 p.
- Benitez-Lobo, D. J., & Campo-Arana, R. O. (2021). Manejo de la marchitez vascular Sclerotium sp. del caupí Vigna unguiculata. Fitopatología Colombiana 45(1):19-24.
- Castellanos, G., Jara, C., & Mosquera, G. (2011). Guías prácticas de laboratorio para el manejo de patógenos del frijol. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT), Cali (Colombia), 232 p. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/54435
- Companioni-González, B., Domínguez-Arizmendi, G., & García-Velasco, R. (2019).Trichoderma: su potencial en el desarrollo sostenible de la agricultura. Biotecnología Vegetal, 19(4): 237-248. http://scielo.sld.cu/pdf/bvg/v19n4/2074-8647-bvg-19-04-237.pdf
- Da Ros-Zanette, C., Rasche-Alvarez, J., Aguayo-Trinidad, S., González, L., & Cabral-Antúnez, C. (2018). Eficiencia de fungicidas frente a la incidencia de patógenos en semillas de trigo. Revista Agrogeoambiental, 10(3):121-134. http://dx.doi.org/10.18406/2316-1817v10n320181215
- Díaz-Padilla, Gabriel; Rodríguez-Yzquierdo, Gustavo Adolfo; Montana, Lennys; Miranda-Salas, Tatiana-Camila, Basso, C., & Arcia-Montesuma, M. (2020). Efecto de la aplicación de bioestimulantes y Trichoderma sobre el crecimiento en plántulas de maracuyá (passiflora edulis sims) en vivero. Bioagro, 32(3):195-204. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=7901981
- Duarte-Leal, Y., Martínez-Coca, B., Café-Filho, A., & Bassay-Blum, L. (2020). Caracterización fisio-cultural y compatibilidad micelial de aislamientos de Sclerotium sp. procedentes de siete hospedantes. Revista de Protección Vegetal, 35(1):1-10. http://scielo.sld.cu/pdf/rpv/v35n1/2224-4697-rpv-35-01-e08.pdf
- Espinoza-Ahumada, C. A., Gallegos-Morales, G., Ochoa-Fuentes, Y. M., Hernández-Castillo, F. D., Méndez-Aguilar, R., & Rodríguez-Guerra, R. (2019). Antagonistas microbianos para biocontrol de la marchitez y su efecto promotor en el rendimiento de chile serrano. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 10(n.esp.23): 187-197. https://doi.org/10.29312/remexca.v0i23.2020
- FENALCE, FONDO DE IMPORTACIONES DE LEGUMINOSAS. (2020). Informe final del proyecto capacitación en producción de fríjol con tecnologías más limpias. Antioquia (Colombia): 73 p. http://www.fenalce.org/nueva/pg.php?pa=19
- Fernández-Gomez, W., & Arroyo-Rosales, F. (2019). Evaluación de 10 genotipos de frijol caupí (Vigna Unguiculata (L) Walp.) por características agronómicas y nutricionales en el municipio de cereté – córdoba [Tesis Ingeniería agronómica]. Montería (Colombia): Universidad de Córdoba, Facultad de Ciencias Agrícolas, 79 p. https://repositorio.unicordoba.edu.co/bitstream/handle/ucordoba/3300/Fern%C3%A1ndezGomezWilson%20-%20ArroyoRosalesFrancyLuz.pdf?sequence=1&isAllowed=y
- Gerrano, A. S., Jansen, W., Venter, S., Shargie, N., Amelework, B., Shimelis, H., & Labuschagne, Maryke. (2018). Selección de los genotipos de caupí basado en mineral de grano y el contenido total de proteínas, Acta Agriculturae Scandinavica, Sección B - Ciencia del suelo y las plantas, 69(2):155-166.
- Guillén-Sánchez, D., Hernández-Pérez, R., Andrade-Rodríguez, M., López-Martínez, V., Alia-Tejacal, I., & Juárez-López, P. (2018). Eficacia de seis fungicidas sobre Mycosphaerella citri en naranja ‘Valencia’ en el estado mexicano de Morelos. Revista Centro Agrícola, 45(1):5-13. http://scielo.sld.cu/pdf/cag/v44n3/cag10317.pdf
- Jiménez-Enriquez, P., Barrera-Aguilar, P., Huachi-Espín, L., Vera-Zambrano, A., & Caicedo-Vargas, C. (2020). Propagación in vitro de Quishuar (buddleja incana ruíz & pav). La Granja, 31(1):61-71. https://www.redalyc.org/journal/4760/476062548005/476062548005.pdf
- Larios-Larios, E. J., Valdovinos-Nava, J. W., Chan-Cupul, W., García-López, F. A., Manzo-Sánchez, G., & Buenrostro-Nava, M. T. (2020). Biocontrol de Damping off y promoción del crecimiento vegetativo en plantas de Capsicum chinense (Jacq) con Trichoderma spp. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 10(3): 471-483 https://doi.org/10.29312/remexca.v10i3.332
- Macias-Castro, V. A. (2019). Efecto de Trichoderma sobre la incidencia de enfermedades en el cultivo de arroz en el sector perimetral Daule [Tesis Ingeniería agronómica]. Guayaquil (Ecuador): Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Guayaquil, 84 p. http://repositorio.ug.edu.ec/handle/redug/45332
- Mancipe-Murillo, C., Calderón-Hernández, M., & Pérez-Martínez, L. V. (2018). Evaluación de viabilidad de semillas de 17 especies tropicales altoandinas por la prueba de germinación y la prueba de tetrazolio. Caldasia, 40(2): 366-382. https://doi.org/10.15446/caldasia.v40n2.68251
- Mantecón, Jorge. (2015). Fungicidas aplicados al suelo como estrategia de manejo integrado de enfermedades en papa, bajo escenarios de elevada infestación inicial y residual. Revista Latinoamericana de la Papa, 19(1):29-39. https://doi.org/10.37066/ralap.v19i1.224
- Martínez, S., Escalante, F., & Casales, L. (2013). Utilización de Fosfito de K para el control de enfermedades de tallo y vaina en arroz. Asistente de Investigación, INIA, Resultados experimentales. 6 p.. http://www.ainfo.inia.uy/digital/bitstream/item/4003/1/Ad-735-4ManejoIntegrado-4-6.pdf
- Mckinney, Harold. (1923). Influence of soil, temperatura and moisture on infection of wheat seedlings by Helminthosporium sativum. Journal of Agricultural Research, 31(9): 827-840. https://handle.nal.usda.gov/10113/IND43966679
- Morelo-Zumaqué, M. C., Otero-Pérez, M. (2018). Evaluación de 10 genotipos de fríjol caupí (Vigna unguiculata (L.) Walp.) por sus características agronómicas y nutricionales en el municipio de Sampués – Sucre [Tesis Ingeniería agronómica]. Montería (Colombia): Universidad de Córdoba, Facultad de Ciencias Agrícolas, 85 p. https://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/3300
- Muñoz-Quintana, M. M. (2020). Eficiencia del ácido giberélico, microorganismos nativos, Trichoderma Sp. y melaza en plantillas de Banano, en la provincia de Los Ríos. [Trabajo de investigación]. Babahoyo (Ecuador): Universidad Técnica De Babahoyo, Facultad De Ciencias Agropecuarias, 79 p. http://dspace.utb.edu.ec/handle/49000/8246
- Oporta-Pichardo, E. D., & Rivas-Cáseres, A. M. (2006). Efecto de la densidad poblacional y la época de siembra en el rendimiento y la calidad de la semilla de una población de caupí rojo (Vigna unguiculata (L.) Walp) en la Finca El Plantel. [Trabajo de Diploma] Managua (Nicaragua): Universidad Nacional Agraria, Facultad de Agronomía. Departamento de Producción Vegetal, 40 p. https://www.yumpu.com/es/document/read/30836117/universidad-nacional-agraria-facultad-de-agronomia-departamento
- Rivera-Méndez, W., Obregon, M., Morán-Diez, M., & Enrique-Monte, R. H. (2020). Trichoderma asperellum biocontrol activity and induction of systemic defenses against Sclerotium cepivorum in onion plants under tropical climate conditions. Biological Control, 141(1):104-145. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2019.104145
- Schoonhoven, A. V., & Pastor-Corrales, M. A. (1987). Sistema estándar para la evaluación de germoplasma de frijol. Cali (Colombia): Centro International de Agricultura Tropical CIAT, 56 p. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/69699
- Tomalá- Rossi, M. (2002). Evaluación de tratamientos para aumentar la germinación en la semilla de aguacate. Proyecto Especial de Ingeniero Agrónomo, El Zamorano (Honduras): Zamorano carrera de ciencia y producción agropecuaria, 35 p. https://bdigital.zamorano.edu/server/api/core/bitstreams/cc3f9404-5c80-4de1-bb19-d33809c506fd/content
- Torrado-Martínez, J., Castellanos-González, L., & Céspedes-Novoa, N. (2020). Evaluación de alternativas biológicas para el control de ascochyta spp. en el cultivo de arveja, Pamplona, Norte de Santander. Revista ambiental agua, aire y suelo, 11(1):1-10. https://doi.org/10.22490/21456453.3650
- Valle-De La Paz, M., Guillén-Sánchez, D., Perales-Rosas, D., López-Martínez, V., Juárez-López, P., Martínez-Fernández, E., Hernández-Arenas, M., Ariza-Flores, R., & Gijón-Hernán, A. (2019). Distribution, incidence and severity of dieback (Lasiodiplodia spp.) in persa lime in Morelos, Mexico. Mexican Journal of Phytopathology, 37(3): 464-478. https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.1904-7
- Zapata-Narváez, Y. A. (2018). Desarrollo de una estrategia para el manejo integrado de enfermedades del cultivo de mora (Rubus glaucus, Benth) en función de su sostenibilidad [Tesis Magister en Agrociencias]. Bogotá (Colombia): Universidad de La Salle, Facultad de Ciencias Agropecuarias, 127 p. http://hdl.handle.net/20.500.12324/34055