Revista de Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research

Vol. 24 Núm. 1 (2022)
Artículo original

Variación del color de macroalga Lessonia trabeculata deshidratada con secador de rayos infrarrojos

pdf
  • Daphne H. Castro Arata,
  • Edwin Llamoca Domínguez,
  • Joanuel Anthony Quinteros,
  • Yuri K. Castillo Flores,
  • Sheda Méndez Ancca
Daphne H. Castro Arata
Director de CITE Agroindustrial Moquegua - Instituto Tecnológico de la Producción, Moquegua – Perú.
Edwin Llamoca Domínguez
Director de CITE Agroindustrial Moquegua - Instituto Tecnológico de la Producción, Moquegua – Perú.
Joanuel Anthony Quinteros
Director de CITE Agroindustrial Moquegua - Instituto Tecnológico de la Producción, Moquegua – Perú.
Yuri K. Castillo Flores
Escuela Profesional de Ingeniería Pesquera de la Universidad Nacional de Moquegua - Perú.
Sheda Méndez Ancca
Universidad Nacional de Moquegua Perú

Publicado 2022-02-21

Palabras clave

  • secado por rayos infrarrojos, colorimetría, calidad, Lessonia trabeculata.

Cómo citar

Castro Arata, D. H. ., Llamoca Domínguez, E. ., Anthony Quinteros, J. ., Castillo Flores, Y. K. ., & Méndez Ancca, S. (2022). Variación del color de macroalga Lessonia trabeculata deshidratada con secador de rayos infrarrojos. Revista De Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research, 24(1), 37-44. https://doi.org/10.18271/ria.2022.309

Resumen

La harina de pescado concentra alto porcentaje de proteínas y su costo monetario es relativamente alto, buscar posibles alternativas en las macroalgas con propósitos de mejora es una opción. El color es una característica primordial de los alimentos, sin embargo, el secado por el método Infrarrojo como tecnología emergente para el estudio de la macroalga Lessonia trabeculata es poco estudiado. Por ello, se caracterizó objetivamente la degradación y cambio del color en el proceso de secado por rayos infrarrojos (IR) a diferentes temperaturas 40°C, 55°C y 70°C con la escala de espacio de color (CIE-L*a*b*), a través del uso de un espectrofotómetro. Se procedió a secar con rayos infrarrojos en una cámara de calentamiento radiante infrarrojo de potencia 4.5kW, 20.5 Amperios. Los resultados indican que el mejor tratamiento de color determinado fue para la macroalga Lessonia trabeculata a una temperatura de 40°C con valores para: L*= 44,758±0,227, a*= -1.564 ± 0,016 y b* = 11,050±0,017; obteniendo una cinética de primer orden para escala logarítmica correspondiente a los parámetros L*.b* en función al tiempo, asimismo se alcanzó un valor de Energía de activación de Ea = 24.062 KJ/mol y de la constante de Arrhenius k0 = 0.0197 min-1.  Se concluye que existe variabilidad inversa entre el color de la macroalga y la temperatura aplicada en el proceso de secado; siendo los valores de los parámetros de color L*, a*, b* de la macroalga disminuye a medida que se incrementa la temperatura, acarreando con ello la degradación del color.

pdf

Referencias

  1. Aghajanzadeh, S., Kashaninejad, M., & Ziaiifar, A. M. (2016a). Ciencia innovadora de los alimentos y tecnologías emergentes fisicoquímicas clave del jugo de lima. 38, 139–148.
  2. Aghajanzadeh, S., Kashaninejad, M., & Ziaiifar, A. M. (2016b). Effect of infrared heating on degradation kinetics of key lime juice physicochemical properties. Innovative Food Science and Emerging Technologies, 38, 139–148. https://doi.org/10.1016/j.ifset.2016.09.027
  3. Aghajanzadeh, S., Ziaiifar, A. M., Kashaninejad, M., Maghsoudlou, Y., & Esmailzadeh, E. (2016). Thermal inactivation kinetic of pectin methylesterase and cloud stability in sour orange juice. Journal of Food Engineering, 185, 72–77. https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2016.04.004
  4. Ahmed, J., Kaur, A., & Shivhare, U. (2002). Color degradation kinetics of spinach, mustard leaves, and mixed puree. Journal of Food Science, 67(3), 1088–1091. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2002.tb09457.x
  5. Badui, S. (2006). Química de los Alimentos (4th ed.). Pearson Educación. México.
  6. Bermejo, R., Macías, M., Sánchez-García, F., Love, R., Varela-Álvarez, E., & Hernández, I. (2020). Influence of irradiance, dissolved nutrients and salinity on the colour and nutritional characteristics of Gracilariopsis longissima (Rhodophyta). Algal Research, 52(November), 102121. https://doi.org/10.1016/j.algal.2020.102121
  7. Berry, H. M., Lai, F., Kende, A., Rickett, D. V., Baxter, C. J., Enfissi, E. M. A., & Fraser, P. D. (2021). Understanding colour retention in red chilli pepper fruit using a metabolite profiling approach. Food Chemistry: Molecular Sciences, 2(June 2020), 100013. https://doi.org/10.1016/j.fochms.2021.100013
  8. Bixley, G. S., Clark, K. M., & James, A. P. (2018). Skin colour predicts fruit and vegetable intake in young Caucasian men: A cross-sectional study. Journal of Nutrition and Intermediary Metabolism, 12, 20–27. https://doi.org/10.1016/j.jnim.2018.06.001
  9. Cahui-Ccama, J. M. (2015). Efecto del sustrato sobre el crecimiento y supervivencia de Chondracanthus chamissoi, en cultivo en sistema suspendido en el Litoral Marino de Ilo (Issue 052).
  10. Campos, J., Hita, E., Romero, J., Melgosa, M., Artigas, J. M., Capilla, P., Felipe, A., Verdú, F. M., Pujol, J., Negueruela, I., & Jiménez del Barco, L. (1997). Optiva pura y aplicada. 30, 1–35.
  11. Césari, M., Stefanoni, M. E., & Ventrera, N. (2018). Nuevo método de medida del color para alimentos vegetales Nuevo método de medida del color para alimentos vegetales. October 2016.
  12. Chutintrasri, B., & Noomhorm, A. (2007). Color degradation kinetics of pineapple puree during thermal processing. LWT - Food Science and Technology, 40(2), 300–306. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2005.11.003
  13. Cömert, E. D., Mogol, B. A., & Gökmen, V. (2020). Relationship between color and antioxidant capacity of fruits and vegetables. Current Research in Food Science, 2, 1–10. https://doi.org/10.1016/j.crfs.2019.11.001
  14. Cortés, M., & Chiralt, A. (2008). Cinética De Los Cambios De Color En Manzana. 8–16.
  15. Costa, M., Cardoso, C., Afonso, C., Bandarra, N. M., & Prates, J. A. M. (2021). Current knowledge and future perspectives of the use of seaweeds for livestock production and meat quality: a systematic review. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 105(6), 1075–1102. https://doi.org/10.1111/jpn.13509
  16. Delgado, E. (2014). Diseño, modelo matemático y construcción de un secadero optimizado con energías límpias.
  17. Demiray, E., & Tulek, Y. (2015). Color Degradation Kinetics of Carrot (Daucus carotaL.) Slices during Hot Air Drying. Journal of Food Processing and Preservation, 39(6), 800–805. https://doi.org/10.1111/jfpp.12290
  18. Desrosier, N. W. (2006). Conservación de alimentos, México (Compañia E).
  19. Ecke, F. (2018). The added value of bryophytes and macroalgae in ecological assessment of lakes. Ecological Indicators, 85(June 2017), 487–492. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2017.10.069
  20. Escobar-Mamani, F., Branca, D., & Haller, A. (2020). Investigación de montaña sobre y para la región andina. Revista de Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research, 22(4), 311–312. https://doi.org/10.18271/ria.2020.191
  21. Francavilla, M., Manara, P., Kamaterou, P., Monteleone, M., & Zabaniotou, A. (2015). Cascade approach of red macroalgae Gracilaria gracilis sustainable valorization by extraction of phycobiliproteins and pyrolysis of residue. Bioresource Technology, 184, 305–313. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2014.10.147
  22. Gomez, L. P., Alvarez, C., Zhao, M., Tiwari, U., Curtin, J., Garcia-Vaquero, M., & Tiwari, B. K. (2020). Innovative processing strategies and technologies to obtain hydrocolloids from macroalgae for food applications. Carbohydrate Polymers, 248(July), 116784. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2020.116784
  23. Hoang, T. H., Stone, D. A. J., Duong, D. N., Bansemer, M. S., Harris, J. O., & Qin, J. G. (2017). Colour change of greenlip abalone (Haliotis laevigata Donovan) fed formulated diets containing graded levels of dried macroalgae meal. Aquaculture, 468, 278–285. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2016.10.027
  24. Ježek, D., Tripalo, B., Brnčić, M., Karlović, D., Rimac-Brnčić, S., & Vikić-Topić, D. (2008). Dehydration of Celery by Infrared Drying. Croatica Chemica Acta, 81, 325–331.
  25. Min, B. R., Parker, D., Brauer, D., Waldrip, H., Lockard, C., Hales, K., Akbay, A., & Augyte, S. (2021). The role of seaweed as a potential dietary supplementation for enteric methane mitigation in ruminants: Challenges and opportunities. Animal Nutrition, 7(4), 1371–1387. https://doi.org/10.1016/j.aninu.2021.10.003
  26. Morales-Contreras, B. E., Flórez-Fernández, N., Dolores Torres, M., Domínguez, H., Rodríguez-Jasso, R. M., & Ruiz, H. A. (2022). Hydrothermal systems to obtain high value-added compounds from macroalgae for bioeconomy and biorefineries. Bioresource Technology, 343(July 2021). https://doi.org/10.1016/j.biortech.2021.126017
  27. Nguyen, T. V. L., Nguyen, P. B. D., Luu, X. C., Huynh, B. L., Krishnan, S., & Huynh, P. T. (2019). Kinetics of nutrient change and color retention during low-temperature microwave-assisted drying of bitter melon (Momordica charantia L.). Journal of Food Processing and Preservation, 43(12), 1–12. https://doi.org/10.1111/jfpp.14279
  28. Novoa, D. F., & Ramírez-Navas, J. S. (2012). Colorimetric Characterization of Manjar Blanco Del Valle. Biotecnología En El Sector Agropecuario y Agroindustrial, 10(2), 54–60.
  29. ONU / CEPAL. (2017). Agenda 2030 y los Objetivos de Desarrollo Sostenible: una oportunidad para América Latina y el Caribe (p. 63). http://repositorio.cepal.org/handle/11362/40155
  30. Rastogi, N. K., & Raghavarao, K. S. M. . (2002). Recent developments in osmotic dehydration: methods to enhance mass transfer. Food Sci. and Technol, 13(2), 48–59.
  31. Ratti, C., & Mujumbar, A. S. (2006). Handbook of Industrial Drying. In Infrared Drying (Taylor & F, pp. 423–438).
  32. Salavarria, E. A., & Sujay, P. (2020). Industrial and Environmetal Biotechnology Mini Review Una mirada a los estudios de transcriptoma en al - gas pardas de importancia industrial , en especial del género Macrocystis. 27(1), 49–53.
  33. Schifferstein, H. N. J., Wehrle, T., & Carbon, C. C. (2019). Consumer expectations for vegetables with typical and atypical colors: The case of carrots. Food Quality and Preference, 72(September 2018), 98–108. https://doi.org/10.1016/j.foodqual.2018.10.002
  34. Sekine, T., Nagai, H., & Hamada-Sato, N. (2021). Antihypertensive and probiotic effects of hidakakombu (Saccharina angustata) fermented by lacticaseibacillus casei 001. Foods, 10(9), 1–11. https://doi.org/10.3390/foods10092048
  35. Shpigel, M., Guttman, L., Shauli, L., Odintsov, V., Ben-Ezra, D., & Harpaz, S. (2017). Ulva lactuca from an Integrated Multi-Trophic Aquaculture (IMTA) biofilter system as a protein supplement in gilthead seabream (Sparus aurata) diet. Aquaculture, 481(January), 112–118. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2017.08.006
  36. Zapata-Rojas, J. C., Gonzales-Vargas, A. M., & Zevallos-Feria, S. A. (2020). Estudio comparativo para propagación vegetativa de Chondracanthus chamissoi “Yuyo” sobre tres tipos de sustrato en ambiente controlado y su viabilidad en la región Moquegua. Journal of Chemical Information and Modeling, 11(4), 37–47. https://doi.org/https://doi.org/10.29019/enfoqueute.v11n4.642
  37. Zapata Rojas, C. (2018). Estudio comparativo en la propagación vegetativa de Chondracanthus chamissoi “yuyo” en tres tipos de sustrato en ambiente controlado en la Región Moquegua. Nacional de Moquegua.

Artículos similares

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.