Revista de Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research

Vol. 25 Núm. 3 (2023)
Artículo original

Intensidad de la luz y sacarosa en la respuesta morfo-fisiológica in vitro de plántulas Selenicereus megalanthus (Haw.)

pdf
  • Carlos Eduardo Millones Chanamé,
  • Ernestina Rosario Vásquez Castro
Carlos Eduardo Millones Chanamé
Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza de Amazonas, Chachapoyas, Perú
Ernestina Rosario Vásquez Castro
Universidad Nacional Toribio Rodríguez de Mendoza de Amazonas, Chachapoyas, Perú

Publicado 2023-08-08

Palabras clave

  • Cactaceae, pitahaya amarilla, fotoautotrófico, contenido hídrico, micropropagación, intensidad de luz

Cómo citar

Millones Chanamé, C. E., & Vásquez Castro, E. R. (2023). Intensidad de la luz y sacarosa en la respuesta morfo-fisiológica in vitro de plántulas Selenicereus megalanthus (Haw.). Revista De Investigaciones Altoandinas - Journal of High Andean Research, 25(3), 140-147. https://doi.org/10.18271/ria.2023.528

Resumen

Mejorar la eficiencia en las condiciones de cultivo in vitro en protocolos de la micropropagación de pitahaya amarilla establecidos, permite evaluar la dependencia de la sacarosa en el medio de cultivo bajo condiciones fotoautotróficas con la finalidad de obtener plántulas de alta calidad en menor tiempo, que favorezca su aclimatación en la producción masiva de esta especie. La presente investigación tuvo como objetivo evaluar los niveles de intensidad de la luz y el empleo o no de la sacarosa en el medio de cultivo sobre la respuesta morfológica y fisiológica in vitro de plántulas de pitahaya amarilla (S. megalanthus). Secciones vegetativas de pitahaya amarilla fueron colocadas en medios de cultivo de crecimiento y desarrollo para la obtención de esquejes de aproximadamente seis centímetros de largo para la obtención de los explantes. Los recipientes fueron colocados a diferentes intensidades de la luz: 50, 100 y 150 μmol/m-2s-1, utilizando lámparas fluorescentes compactas, cuyas intensidades fueron ajustadas empleando un luxómetro. Se empleó un diseño completamente al azar con arreglo factorial (Factor A: tres intensidades de luz y Factor B: presencia y ausencia de sacarosa en el medio de cultivo de crecimiento y desarrollo) y siete repeticiones por tratamiento. Las evaluaciones de la respuesta morfológica y fisiológica fueron realizadas a los 45 días de cultivo in vitro. Los rasgos relacionados con el contenido hídrico, peso seco y longitud de brote permiten explicar la respuesta fotoautotrófica de las plántulas de pitahaya amarilla cultivada in vitro empleando intensidades de luz de 50 y 100 μmol/m-2s-1.

pdf

Referencias

  1. Barrales-López, A., Robledo-Paz, A., Trejo, C., Espitia-Rangel, E. & Rodríguez, O.J.L. (2015). Improved in vitro rooting and acclimatization of Capsicum chinense Jacq. Platlets. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 51(3), 274-283. https://doi.org/10.1007/s11627-015-9671-3
  2. Caetano, D.G., Escobar, R., Caetano, C.M. & Vaca, J.C.V. (2014). Estandarización de un protocolo de regeneración en pitahaya amarilla (Selenicereus megalanthus (K. Schum. Ex Vaupel) Moran). Acta Agronómica 63(1), 31-41. http://dx.doi.org/10.15446/acag.v63n1.36051
  3. Chongloi, L., Gunnaiah, R., Hipparagi, K., Guranna, P., Prakasha, D.P., Chittapur, R., Kamble, A. & Vishweshwar, S. (2022). Economic analysis of micropropagation of dragon fruit (Hylocereus undatus (Haw.) Britton and Rose). International Journal of Plant & Soil Science 34(22), 1267-1275. https://doi.org/10.9734/ijpss%2F2022%2Fv34i2231496
  4. Cruz, A., Tovar, Y.P. & Morillo, Y. (2016). Caracterización morfológica de Selenicereus megalanthus (K. Schum. Ex Vaupel) Moran en la provincia de Lengupá. Ciencia en Desarrollo 7(2), 23-33. http://www.scielo.org.co/pdf/cide/v7n2/v7n2a02.pdf
  5. De Assis, E.S., Neto, A.R., De Lima, L.R., Silva, F.G., Rosa, M., Filho, S.C.V. & Leite, M.S. (2016). In vitro culture of Mouriri elliptica (Mart.) under conditions that stimulate photoautothrophic behavior. Australian Journal of Crop Science 10(2), 229-236.
  6. De Feria, M., Rojas, D., Reyna, M., Quiala, E., Solls, E. & Zurita, F. (2012). In vitro propagation of Hylocereus purpusii Briton & Rose, a mexican species in danger of extinction. Biotecnología Vegetal 12(2), 77-83.
  7. Hua, Q., Chen, P., Liu, W., Ma, Y., Liang, R., Wang, L., Wang, Z., Hu, G. & Qin, Y. (2015). A protocol for rapid in vitro propagation of genetically diverse pitaya. Plant Cell Tiss Organ Cult 120(2), 741-745. https://doi.org/10.1007/s11240-014-0643-9
  8. Hoang, N.N., Kitaya, Y., Shibuya, T. & Endo, R. (2020). Effects of supporting materials in in vitro acclimatization stage on ex vitro growth of wasabi plants. Scientia Horticulturae 261, 1-7. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2019.109042
  9. Hoang, N.N., Kitaya, Y., Morishita, T., Endo, R. & Shibuya, T. (2017). A comparative study on growth and morphology of wasabi plantlets under the influence of the micro-environment in shoot and root zones during photoautotrophic and photomixotrophic micropropagtion. Plant Cell Tiss Organ Cult 130(2), 255-263. https://doi.org/10.1007/s11240-017-1219-2
  10. Leite, M.S, Silva, F.G., Assis, E.S., Neto, A. R., Mendes, G.C. & Rosa, M. (2017). Morphoanatomy and physiology of Pouteria gradneriana Radlk plantlets in vitro at varied photosynthetic photon flux densities. Acta Scientiarum 39(2), 217-224. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v39i2.32515
  11. Malláp-Detquizán, G., Vilca-Valqui, N.C., Meléndez-Mori, J.B., Huaman-Huaman, E. & Oliva, M. (2022). Multiplicación in vitro de pitahaya amarilla (Hylocereus megalanthus) a partir de plántulas obtenidas in vitro. Agronomía Mesoamericana 33(1), 45472. https://doi.org/10.15517/am.v33i1.45472
  12. Martins, J.P.R., Rodrigues, L.C.A., Santos, E.R., Gontijo, A.B.P.L. & Falqueto, A.R. (2020). Impacts of photoautotrophic, photomixotrophic, and heterotrophic conditions on the anatomy and photosystem II of in vitro-propagated Aechmea blanchetiana (Baker) L.B. Sm. (Bromeliaceae). In Vitro Cellular & Development Biology – Plant 56(3), 350-361. https://doi.org/10.1007/s11627-019-10034-2
  13. Mejía, N.M., Castro, J.P., Ocampo, Y.C., Salas, R.D., Delporte, C.L. & Franco, L.A. (2020). Evaluation of antioxidant potential and total phenolic content of exotic fruits grown in Colombia. Journal of Applied Pharmaceutical Science 10(9), 50-58. https://doi.org/10.7324/JAPS.2020.10906
  14. Millones, C.E. & Vásquez, E.R. (2010). Micropropagación de plantas derivadas de semillas botánicas de pitahaya amarilla (Selenicereus megalanthus Britton & Rose) provenientes de la provincia de Utcubamba, región Amazonas. Investigaciones Amazonenses 4(1), 34-38.
  15. Montiel-Fraustro, L.B., Del Valle, J.R. & Cisneros, A. (2016). Propagación in vitro de Hylocereus monocanthus (Lem.) Briton y Rose. Biotecnología Vegetal 16(2), 113-123. https://revista.ibp.co.cu/index.php/BV/article/view/516
  16. Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid grown and bioassay with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum 15(3), 473 – 497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
  17. Nguyen, Q.T., Xiao, Y. & Kozai, T. (2016). Photoautotrophic micropropagation. In: T. Kozai, G. Niu, M. Takagaki Eds. Plant Factory, Burlington: Academic Press, 271-283. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-816691-8.00023-6
  18. Sáez, P.L., Bravo, L.A., Sánchez-Olate, M., Bravo, P.B. & Rios, D.G. (2016). Effect of photon flux density and exogenous sucrose on the photosynthetic performance during in vitro culture of Castanea sativa. American Journal of Plant Sciences 7(14), 2087-2105. https://doi.org/10.4236/ajps.2016.714187
  19. Sasongko, A.B., Fatumi, A. & Indrianto, A. (2016). The growth improvement of Grammatophyllum scriptum (Lindl.) Bl. in vitro plantlet using photoautotrophic micropropagation system. Indonesian Journal of Biotechnology 21(2), 109-116. https://doi.org/10.22146/ijbiotech.27167
  20. Shen, J. R. (2015). The structure of photosystem II and the mechanism of water oxidation in photosynthesis. Annual review of plant biology 66 (1), 23-48. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-050312-120129
  21. Suárez, R.S., Caetano, C.M. & Ramírez, H. (2014). Multiplicación de Selenicereus megalanthus (pitahaya amarilla) e Hylocereus polyrhizus (pitahaya roja) vía organogénesis somática. Acta Agronómica 63(3), 272-281. http://dx.doi.org/10.15446/acag.v63n3.40980
  22. Torres, Y., Melo, D.V., Torres-Valenzuela, L.S., Serna-Jiménez, J.A. & Villarreal, A.S. (2017). Evaluation of bioactive compounds with functional interest from yellow pitahaya (Selenicereus megalanthus Haw). Revista Facultad Nacional de Agronomía 70(3), 8311-8318. https://doi.org/10.15446/rfna.v70n3.66330
  23. Weiss, I., Mizrahi, Y., & Raveh, E. (2010). Effect of elevated CO2 on vegetative and reproductive growth characteristics of the CAM plants Hylocereus undatus and Selenicereus megalanthus. Scientia horticulturae, 123(4), 531-536. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2009.11.002
  24. Zambrano-Forero, C.J., Ríos, J.A., Beltrán, D.M. & Mesa, N. (2015). Evaluación de reguladores de crecimiento en la propagación in vitro de Hylocereus megalanthus (pitahaya amarilla). Revista Tumbaga 1(10), 76-87. http://revistas.ut.edu.co/index.php/tumbaga/article/view/994
  25. Zhang, M., Zhao, D., Ma, Z., Li. X. & Xiao, Y. (2009). Growth and photosyntethic capability of Mormodica grosvenori plantlets grown photoautotrophically in response to ligth intensity. HortScience 44(3), 757-763. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.44.3.757

Artículos similares

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.